Efecto sinérgico de microorganismos con potencial probiótico y compuestos orgánicos sobre el crecimiento y la supervivencia del langostino Penaeus vannamei

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.53554/boletin.v41i1.440

Palabras clave:

Probióticos, Penaeus vannamei, sinergia

Resumen

La actividad langostinera frecuentemente se ha visto enfrentada por numerosas enfermedades bacterianas, entre ellas la causada por cepas de Vibrio parahaemolyticus, portadoras de los genes de las toxinas pirA y pirB (VpAHPND). Una práctica común para el tratamiento de estas enfermedades es la aplicación de antibióticos, sin embargo, su uso indiscriminado representa un riesgo para la salud pública, lo que ha conllevado a la búsqueda de nuevas alternativas como la suplementación de antagonistas probióticas y/o el uso de compuestos orgánicos. La presente investigación tuvo como objetivo, evaluar la capacidad probiótica de microorganismos nativos de Penaeus vannamei en sinergia con compuestos orgánicos. Para ello, se realizó el aislamiento y caracterización molecular de bacterias, posteriormente se evaluó su capacidad probiótica a través de ensayos de antagonismo in vitro mediante la técnica de discos de agar, enfrentados con cepas patógenas de Vibrio previamente identificadas. Los aislados que mostraron capacidad de inhibición, fueron evaluados por la PCR, para detectar los genes relacionados a los péptidos antimicrobianos (AMP) logrando seleccionar una cepa (45) positiva para el gen surfactin y dos cepas (47 y 59) positivas para surfactin, bacylisin, bacyllomicin y fengycin. La cepa 45 mejoró la supervivencia del P. vannamei retado con vibrios (AHPND+) cuando fue inoculada, de forma individual y en combinación con el ácido orgánico “ProtAcid”. El uso combinado de la bacteria y el ácido orgánico se propone como una estrategia profiláctica para disminuir el impacto por las infecciones de vibrios en el cultivo de langostino.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Alternative Metrics

Métricas

Cargando métricas ...

Citas

Adams, D. & Boopathy, R. (2013). Use of formic acid to control vibriosis in shrimp aquaculture. Biologia, 68(6) 1017–1021. https://doi.org/10.2478/s11756-013-0251-x

Butucel, E., Balta, I., McCleery, D., Marcu, A., Stef, D., Pet, I., Callaway, T., Stef, L. & Corcionivoschi, N. (2023). The Prebiotic effect of an organic acid mixture on Faecalibacterium prausnitzii metabolism and its antipathogenic role against Vibrio parahaemolyticus in shrimp. Biology, 12, 57. https://doi.org/10.3390/biology12010057

Comisión de Promoción del Perú para la Exportación y el Turismo [Promperú]. (2022). Informe situacional langostinos. https://hdl.handle.net/20.500.14152/6519

El-Saadony, M. T., Alagawany. M., Patra, A. K., Kar, I., Tiwari, R., Dawood, M. A. O., Dhama, K. & AbdelLatif, H. M. R. (2021). The functionality of probiotics in aquaculture: An overview. Fish & Shellfish Immunology, 117, 36-52. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2021.07.007

Feria, M., Castañeda, A., Toledo, O., Castillo, D., Cueva, M. & Cedeño, V. (2019). Caracterización molecular ómica de una cepa de Bacillus amyloliquefaciens aislada de la microbiota del paiche Arapaima gigas con actividad antagonista contra bacterias patógenas de peces. Rev Inv Vet Perú, 30(2), 908-922. http://www.scielo.org.pe/pdf/rivep/v30n2/a40v30n2.pdf

Hai, N. V. (2015). The use of probiotics in aquaculture. Journal of Applied Microbiology, 119, 917-935. https://doi.org/10.1111/jam.12886

He, W., Rahimnejad, S., Wang, L., Song, K., Lu, K. & Zhang, C. (2017). Effects of organic acids and essential oils blend on growth, gut microbiota, immune response and disease resistance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) against Vibrio parahaemolyticus. Fish & Shellfish Immunology, 70, 164- 173. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2017.09.007

Hong, X. P., Xu, D., Zhuo, Y., Liu, H. Q. & Lu, L. Q. (2016). Identification and pathogenicity of Vibrio parahaemolyticus isolates and immune responses of Penaeus (Litopenaeus) vannamei (Boone). Journal of Fish Diseases, 39, 1085–1097. https://doi.org/10.1111/jfd.12441

Huanambal Sovero, C. (2020). Residuos de antibióticos y resistencia antimicrobiana en acuicultura: antecedentes desde la literatura y percepción de los médicos veterinarios en el Perú [Tesis de Maestría, Universidad Peruana Cayetano Heredia]. Repositorio UPCH. https://hdl.handle.net/20.500.12866/11827

Jia, J., Fu, M., Ji, W., Xiong, N., Chen, P., Lin, J. & Yang, Q. (2024). Surfactin from Bacillus subtilis enhances immune response and contributes to the maintenance of intestinal microbial homeostasis. Microbiology Spectrum, 12(12), e00918-24. https://doi.org/10.1128/spectrum.00918-24

Lightner, D. V. (1996). A Handbook of Shrimp Pathology and Diagnostic Procedures for Diseases of Cultured Penaeid Shrimp. World Aquaculture Society.

Midhun, S. J., Neethu, S., Vysakh, A., Sunil, M. A., Radhakrishnan, E. K. & Jyothis, M. (2017). Antibacterial activity of autochthonous bacteria isolated from Anabas testudineus (Bloch, 1792) and it’s in vitro probiotic characterization. Microbial Pathogenesis, 113, 312-320. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2017.10.058

Mine, S. & Boopathy, R. (2011). Effect of organic acids on shrimp pathogen, Vibrio harveyi. Curr Microbiol., 63, 1-7. https://doi.org/10.1007/s00284-011-9932-2

Mora, I., Cabrefiga, J. & Montesinos, E. (2011). Antimicrobial peptide genes in Bacillus strains from plant environments. International Microbiology, 14, 213-223. https://doi.org/10.2436/20.1501.01.151

Nayak, S. K. (2010). Role of gastrointestinal microbiota in fish. Aquaculture Research, 41, 1553-1573. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02546.x

OANNES. (2024, 01 de agosto). Perú - Una Crisis sin Precedentes en el Sector Acuícola de Langostinos Afecta el Dinamismo Económico, en Especial en la Región Tumbes. https://acortar.link/CIlLLG

Organización de las Naciones Unidas para la Alimentación y la Agricultura [FAO]. (2024). El estado mundial de la pesca y la acuicultura 2024. La transformación azul en acción. https://doi.org/10.4060/cd0683es

Organización Mundial de Sanidad Animal [OMSA]. (2023). Enfermedad de la necrosis hepatopancreática aguda. En Manual Acuático de la OMSA 2023 (Cap. 2.2.1). https://acortar.link/tZjpCb

Phiwsaiya, K., Charoensapsri, W., Taengphu, S., Dong, H. T., Sangsuriya, P., Nguyen, G. T., Pham, H. Q., Amparyup, P., Sritunyalucksana, K., Taengchaiyaphum, S., Chaivisuthangkura, P., Longyant, S., Sithigorngu, P. & Senapin, S. (2017). A natural Vibrio parahaemolyticus ΔpirAVp pirBVp+ mutant kills shrimp but produces neither PirVp toxins nor acute hepatopancreatic necrosis disease lesions. Applied and Environmental Microbiology, 83(16), e00680-17. https://doi.org/10.1128/AEM.00680-17

Proespraiwong, P., Mavichak, R., Imaizumi, K., Hirono, I. & Unajak, S. (2023). Evaluation of Bacillus spp. as potent probiotics with reduction in AHPND-related mortality and facilitating growth performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) farms. Microorganisms, 11, 2176. https://doi.org/10.3390/microorganisms11092176

Ramírez, B., Guevara, M., Montoya, V. & Serna, M. (2020). Evaluación de la patogenicidad de cepas de Vibrio sp. que contienen los genes pirA y pirB aislados de Penaeus vannamei de cultivo. Bol Inst Mar Perú, 35(2), 242–256. https://revistas.imarpe.gob.pe/index.php/boletin/article/view/303

Resolución de Dirección Ejecutiva N°057-2016- SANIPES-DE. (2016). Manual “Indicadores Sanitarios y de Inocuidad para los productos pesqueros y acuícolas para mercado nacional y de exportación”. Organismo Nacional de Sanidad Pesquera (SANIPES). https://www.sanipes.gob.pe/normativas/15_R_DE_N_057_2016_A1.pdf

Reverter, M., Sarter, S., Caruso, D., Avarre, J. C., Combe, M., Pepey, E., Pouyaud, L., Vega-Heredía, S., de Verdal, H. & Gozlan. R. E. (2020). Aquaculture at the crossroads of global warming and antimicrobial resistance. Nature Communications, 11, 1870. https://doi.org/10.1038/s41467-020-15735-6

Rossi, B., Esteban, M. A., García-Beltran, J. M., Giovagnoni, G., Cuesta, A., Piva, A. & Grilli, E. (2021). Antimicrobial power of organic acids and nature-identical compounds against two Vibrio spp.: An in-vitro study. Microorganisms, 9, 966. https://doi.org/10.3390/microorganisms9050966

Serrano-Martínez, E., Casas, G. & Carbajal, J. (2022). Estado sanitario de los moluscos bivalvos y langostinos de Perú. Salud y Tecnología Veterinaria, 10(2), 130-140. https://doi.org/10.20453/stv.v10i2.4397

Soto-Marfileño, K. A., Molina Garza, Z. J., Gomez Flores, R., Molina-Garza, V. M., Ibarra-Gámez, J. C., Gómez Gil, B. & Galaviz-Silva, L. (2024). Genomic characterization of Bacillus pumilus Sonora, a strain with inhibitory activity against Vibrio parahaemolyticus-AHPND and probiotic candidate for shrimp aquaculture. Microorganisms, 12, 1623. https://doi.org/10.3390/microorganisms12081623

Sumi, C. D., Yang, B. W., Yeo, I. C. & Hahm, Y. T. (2015). Antimicrobial peptides of the genus Bacillus: A new era for antibiotics. Can. J. Microbiol., 61, 93–103. https://doi.org/10.1139/cjm-2014-0613

Tinwongger, S., Proespraiwong, P., Thawonsuwan, J., Sriwanayos, P., Kongkumnerd, J., Chaweepack, T., Mavichak, R., Unajak, S., Nozaki, R., Kondo, H. & Hirono, I. (2014). Development of PCR diagnosis method for shrimp acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND) strain of Vibrio parahaemolyticus. Fish Pathology, 49(4), 159–164. https://doi.org/10.3147/jsfp.49.159

Verschuere, L., Rombaut, G., Sorgeloos, P. & Verstrae, W. (2000). Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 64(4), 655–671. https://doi.org/10.1128/mmbr.64.4.655-671.2000

Vicente, A., Taengphu, S., Hung, A. L., Mora, C. M., Dongd, H. T. & Senapin, S. (2020). Detection of Vibrio campbellii and V. parahaemolyticus carrying full-length pirABVp but only V. campbellii produces PirVp toxins. Aquaculture, 519, 734708. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.734708

Wang, D., Li, J., Zhu, G., Zhao, K., Jiang, W., Li, H., Wang, W., Kumar, V., Dong, S., Zhu, W. & Tian, X. (2020). Mechanism of the Potential Therapeutic Candidate Bacillus subtilis BSXE-1601 Against Shrimp Pathogenic Vibrios and Multifunctional Metabolites Biosynthetic Capability of the Strain as Predicted by Genome Analysis. Frontiers in Microbiology, 11, 581802. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.581802

World Health Organization [WHO] & Food and Agriculture Organization of the United Nations [FAO]. (2001). Health and nutrition properties of probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria (FAO Food and Nutrition Paper 85). http://www.fao.org/3/a-a0512e.pdf

Descargas

Publicado

2026-05-19

Cómo citar

Saavedra, K., Ramírez, B., & Guevara, M. (2026). Efecto sinérgico de microorganismos con potencial probiótico y compuestos orgánicos sobre el crecimiento y la supervivencia del langostino Penaeus vannamei. Boletin Instituto Del Mar Del Perú, 41(1), e440. https://doi.org/10.53554/boletin.v41i1.440

Artículos más leídos del mismo autor/a